VELÁZQUEZ SÁNCHEZ, Diego

Formación académica

Doctor en Bioquímica y Biología Molecular — UNIVERSITAT AUTÒNOMA DE BARCELONA
Máster Universitario en Bioquímica y Biología Molecular — UNIVERSITAT AUTÒNOMA DE BARCELONA
Graduado en Bioquímica — UNIVERSITAT AUTÒNOMA DE BARCELONA

Experiencia profesional

Fecha: 09/2012–09/2014
Estudiante del Grado en Bioquímica y del Máster en Bioquímica, Biología Molecular y Biomedicina.

Nombre del proyecto: «Caracterización de la actividad antimicrobiana de la proteína catiónica de eosinófilos y de sus péptidos derivados del extremo N-terminal».

Supervisores: Prof. Ester Boix Borràs, profesora asociada en Autonomous University of Barcelona, Cerdanyola del Vallés (España), y Dr. David Pulido Gómez, investigador asociado en Autonomous University of Barcelona, Cerdanyola del Vallés (España).

Ubicación: Antimicrobial Ribonucleases group, Biochemistry and Molecular Biology Department, Autonomous University of Barcelona, Cerdanyola del Vallés (España).

Fecha: 10/2014–actualidad
Tesis doctoral en Bioquímica, Biología Molecular y Biomedicina: «Mecanismos de regulación de la proteína fosfatasa Z 1 (Ppz1) en Saccharomyces cerevisiae».

Supervisor: Joaquín Ariño, catedrático en Autonomous University of Barcelona, Cerdanyola del Vallès (España).

Ubicación: Biotechnology and Biomedicine Institute (IBB) y Department of Biochemistry and Molecular Biology, Autonomous University of Barcelona.

Máster en Bioquímica, Biología Molecular y Biomedicina.

Publicaciones
Pulido D, Garcia-Mayoral MF, Moussaoui M, Velázquez D, Torrent M, Bruix M y Boix E (2016). Bases estructurales de la neutralización de endotoxinas por la proteína catiónica de eosinófilos. FEBS J. 283(22): 4176–4191. doi: 10.1111/febs.13915.
Pulido D, Arranz-Trullén J, Prats-Ejarque G, Velázquez D, Torrent M, Moussaoui M y Boix E (2016). Nuevos conocimientos sobre el mecanismo de acción antimicrobiano de la RNasa 6 humana: determinantes estructurales de la aglutinación de células bacterianas y la permeabilización de membranas. Int J Mol Sci. 17(4): 552. doi: 10.3390/ijms17040552.
C. Santolaria C, Velázquez D, Strauss E y Ariño J (2018). Las mutaciones en el núcleo hidrofóbico afectan a la estabilidad del trímero Hal3 y reducen su capacidad inhibidora de Ppz1, pero no su función moonlighting de PPCDC. Sci Rep. 8(1): 14701. doi: 10.1038/s41598-018-32979-x.
Ariño J, Velázquez D y Casamayor A (2019). Fosfatasas de proteínas Ser/Thr en hongos: estructura, regulación y función. Microb Cell. 6(5): 217–256. doi: 10.15698/mic2019.05.677.
Publicaciones en preparación
Título: La toxicidad de la proteína fosfatasa Ppz1 implica múltiples dianas.
Diego Velázquez, Chunyi Zhang, Sergey Kovalchuk, María López-Malo, Carlos Calafí, Marcel Albacar, Santos-Ole Jenssen, Antonio Casamayor y Joaquín Ariño.
Manuscrito en preparación.
Título: Sobreexpresión de Ppz1 e impacto en la traducción.
UAB: Calafí, C.; Lopez-Malo, M.; Velázquez, D.; Zhang, C.; Albacar, M.; JA y Casamayor, A.
USev: de la Cruz, J.
Manuscrito en preparación.
Título: Comprensión de la fosforregulación de Ppz1 por la MAPK Hog1.
Velázquez, D. y Ariño, J.
Manuscrito en preparación.
Título: Revelación del dinamismo de la interacción Ppz1–Hal3 in vivo: un enfoque basado en FRET.
Albacar, M.; Velázquez, D.; Cavero, E.; Casamayor, A. y Ariño, J.
Trabajo en curso.
Título: La extensión N-terminal de Hal3 contribuye a la regulación de la función de Ppz1.
Santolaria, C.; Velázquez, D. y Ariño, J.
Trabajo en curso.
Experiencia técnica de laboratorio

Biología molecular: procedimientos de expresión y purificación de proteínas; clonación, extracción y purificación de ADN; amplificación mediante PCR y mutagénesis; y qPCR.

Manejo celular: cultivos eucariotas y procariotas; ensayos antimicrobianos y de citotoxicidad —MTT, MIC y MBC—; cultivos de levaduras; experimentos de curso temporal; y modificación genética de levaduras.

Cromatografía: cromatografía líquida rápida de proteínas —FPLC—, cromatografía de exclusión por tamaño —SEC—, cromatografía de afinidad y cromatografía de purificación por afinidad —GST y His—.

Espectroscopia: espectroscopia de fluorescencia, espectrofotometría, LC-MS/MS y MALDI-TOF.

Técnicas de imagen: microscopía de fluorescencia —FM—, microscopía confocal láser —CLSM—, microscopía electrónica de transmisión —TEM— y microscopía electrónica de barrido —SEM—.

Biofísica: dispersión dinámica de luz —DLS— y preparación y análisis de liposomas.

Proteómica: enriquecimiento de fosfoproteínas, manipulación de fragmentos de gel y análisis de péptidos mediante LC-MS/MS. MaxQuant y Perseus.